采集血液标本时哪些不当操作会造成溶血（为防止采集血液标本时溶血应采取哪些措施及其溶血原因）
采集血液标本时哪些不当操作会造成溶血（为防止采集血液标本时溶血应采取哪些措施及其溶血原因）
有影响的。离心机速度过快等原因都造成血液标本溶血。研究发现，在医源性因素所致的标本溶血中，标本存储或运输不当占百分之4.2，静脉堵塞占百分之6.9，采血速度过快占百分之83.8，原因不明占百分之5.1。
1、运动会引起血液成分的改变，原则上要求患者处于平静、休息状态或正常活动下收集标本。
2、多数试验尤其血液生化检验，一般要求在禁食12小时后清晨空腹采血，因脂肪食物被吸收后可能形成脂血而造成光学干扰；同时食物成分也可改变血液成分，影响测定结果的准确性。应嘱咐患者采血前4小时勿喝茶或咖啡、勿吸烟饮酒。尽量了解患者对刺激物（烟、酒、茶或咖啡）和成瘾性药物的接触史，供评价检验结果时参考。
3、药物对血、尿等成份的影响是一个十分复杂的问题。为了得到正确结果，必须事先停服某种药物，临床医师在选择与解释结果时，必须考虑药物的影响。用于治疗药物监测（TDM）的标本应在药物浓度处于稳定状态时采集，给药后未达到药物浓度稳态时所采集的血样将反映已调剂量的药物的低浓度或谷浓度，如果只采集1份血液标本用于TDM，那么首选检测谷浓度。
由于人体的生理变异和患者的状态存在周期性变化，因此最好在同一时间采集标本，才有助于对每次结果进行比较，以减少由于不同采集时间所造成结果的波动。以下举几类标本采集的最佳时间：
1、血培养 血培养阳性是确诊菌血症和败血症的重要依据，要提高血培养阳性率，快速准确地进行病原学诊断，就必须严格掌握采血时间，应选择患者高热、寒战时，最好是在未使用抗生素或下次抗生素使用前。
2、心肌损伤标志物 不同的心肌损伤标志物在心肌梗死时升高的速度和达到峰值的时间各不相同，如肌红蛋白、肌钙蛋白和肌酸激酶，分别在发病2~4小时、4~12小时和6~9小时，阳性检出率最高。
3、血药浓度监测 药物检测根据药物峰值效应，应在获得稳定的治疗浓度或血药浓度达到稳态后采集血样。一般而言，肌肉注射、静脉给药、口服给药分别在给药后1~2小时，15~30分钟、1~5小时内取血，但对于不同的药物、不同的给药途径，应根据不同的情况确定采血时间，以达到检测谷浓度或峰值浓度的不同目的。如通过静脉输注的药物，一般在完成输注后1~2小时完成药物分布，而地高辛、洋地黄毒苷则需6~8小时才能完成其分布。
4、糖耐量试验 分别在空腹、餐后1小时和2小时采集血液标本。
5、尿液标本 尿液的收集时间取决于所需检测的成分。所测成分如日内变异较大，则需收集24小时尿。过夜尿或晨尿不仅可用于评价肾脏的浓缩能力，还可用于尿液细胞学及管型的检查。
6、输液患者标本 正在输液的患者，最好在输液完成后一段时间采血。如输液时必须采血，切忌在输液臂近端抽血检验，应在未输液的另一侧臂取血。输脂肪乳的患者，应在输完8小时后取血；输碳水化合物、氨基酸、蛋白、电解质的患者，应在输液完成1小时后取血。若患者输入库存过久的血液，由于发生一定程度的溶血，可致患者血钾、乳酸脱氢酶、游离血红蛋白浓度升高。
目录
1 拼音 2 溶血反应的检测试剂
2.1 补体 2.2 绵羊红细胞 2.3 溶血素 2.4 稀释缓冲液
3 溶血反应测定补体法
3.1 CH50试验原理 3.2 CH50试验方法 3.3 临床意义
1 拼音
róng xuè fǎn yìng
免疫溶血反应是补体参与的抗体致敏红细胞的溶解反应。参与反应的成分有3种：①红细胞，一般用绵羊红细胞（SRBC）；②抗红细胞抗体，也称溶血素，多为家兔抗SRBC的抗血清；③补体。
溶血反应的直接用途是测定总补体活性或溶血素的效价；也可利用溶血系统作为指示剂，检测另一反应系统的抗原或抗体，即补体结合试验。
2 溶血反应的检测试剂 2.1 （一）补体
检测血清补体水平或补体活性时需要从受检者采血及分离血清。做补体结合试验时多采用豚鼠血清作为实验用补体的来源。因为补体在体外极易衰变，所以检测补体活性的血清标本和作为补体试剂的血清必须新鲜。
受检者一般做静脉采血，在动物可做心脏采血。血清分离后应及时使用，最好在当日用完。必须保存时采用小量分装的办法，置－70℃下可保存数月，避免反复冻融。冻干制品可长期保存，但其活性都不同程度地比新鲜血清降低。
以豚鼠血清作补体来源时，应考虑到个体差异。为了确保血清中补体的有效活性，必须取3只以上豚鼠的血清混合后使用。
2.2 （二）绵羊红细胞
从绵羊颈静脉无菌采血，抽出血液后立即小心地注入放有玻璃珠的无菌干燥三角烧瓶中，充分旋摇15～20min，以除去纤维蛋白。也可将羊血与等量或2倍量的Alsever血液保存液混合，既有抗凝作用，又适于储存；分装后置4℃，可使用3周。
实验前，取适量抗凝血，加入8～10倍的生理盐水，轻轻混匀后2000r/min离心5min；弃上清，沉淀的红细胞用生理盐水再洗一次，这时上清为无色澄清，如显红色说明有溶血现象，应更换新鲜羊血；第三次用缓冲液洗涤，弃上清，取压积红细胞用缓冲液配制SRBC悬液，使用浓度一般为2％～5％。为使红细胞浓度标准化，可吸取少量红细胞悬液，中入20～30倍的稀释液中，在542nm波长比浊，以吸光度为标准调整红细胞浓度。
2.3 （三）溶血素
溶血素即抗绵羊红细胞抗体，多是以绵羊红细胞免疫家兔而得到兔抗血清。一般没有必要进一步提纯抗体，但在试验前需先进行加热56℃30min或60℃3min以灭活补体。
由于补体溶血试验及补体结合试验均是比较精密的试验，其结果与溶血素的效价有关，所以试验需要滴定溶血素效价；在制备抗血清的过程中，于动物采血前和分离抗血清后也需要滴定溶血素效价。
1．溶血素稀释稀释溶血素时，要先对效价有个大概的估计，以便确定稀释度的范围。动物采血前滴定时稀释范围要稍大些，实验前的滴定便以原先的记录作为参考（溶血素的效价多在数千单位以上）。溶血素稀释一般不采用连续倍比稀释法，因为稀释到最后时跨度太大，不容易确定单位。为了便于操作，现举例按表141配制不同稀释度的溶血素。
表141不同浓度溶血素的配制
最终稀释度 缓冲液（ml） 所加溶血素 稀释度 体积（ml） 1:1000 1.8 1:100 0.2 1:2000 0.2 1:1000 0.2 1:3000 0.4 1:1000 0.2 1:4000 0.2 1:2000 0.2 1:5000 0.8 1:1000 0.2 1:6000 0.2 1:3000 0.2 1:8000 0.2 1:4000 0.2 1:10000 0.2 1:5000 0.2
2．效价滴定将稀释好的溶血素及其他试剂按表142所示逐步加入到各试管中，放置37℃水浴，不要盖上水浴箱的盖子，以免盖子上冷凝的水蒸气滴入试管内引起非补体性溶血。30min后取出观察结果。
表142溶血素的滴定
管号 溶血素稀释度 试管内加的各种试剂材料 结果 溶血素（ml） 1:60稀释补体（ml） 缓冲液（ml） 20％羊红细胞（ml） 1 1:1000 0.1 0.2 0.2 0.1 全溶 2 1:2000 0.1 0.2 0.2 0.1 全溶 3 1:3000 0.1 0.2 0.2 0.1 全溶 4 1:4000 0.1 0.2 0.2 0.1 全溶 5 1:5000 0.1 0.2 0.2 0.1 大部分 6 1:6000 0.1 0.2 0.2 0.1 微溶 7 1:8000 0.1 0.2 0.2 0.1 不溶 8 1:10000 0.1 0.2 0.2 0.1 不溶 9 （对照） － － 0.5 0.1 不溶
温育反应后，完全溶血的试管内液体红色透明，放置一段时间后管底无细胞沉淀，离心后可见少许细胞碎渣。不溶血的管内液体浑浊；放置后可见红细胞沉淀，上清无色透明。不同程度的不完全溶血介于两者的中间变化态。
按照以上标准，以产生完全溶血的最高稀释管为最大有效反应管，以该管的溶血素稀释倍数为溶血素产效价。例如表142中的溶血素效价应为1:4000；在1:4000稀释的情况下，反应液中所含溶血素的的量为1U/ml。
做补体活性测定或补体结合试验时，一般使用2U/ml溶血素（在本例做1:2000稀释），与SRBC悬液等体积混合。
2.4 （四）稀释缓冲液
磷酸缓冲液或巴比妥缓冲液等均可用于溶血试验，pH值应调至7.2～7.4之间。另加入适量氯化钠以保持等渗，并适当地加入一些钙离子和镁离子，这是补体活化所不可缺少的。有的配方还加入0.1％的明胶以使蛋白溶液稳定；加入0.01％NaN3可以防腐，利于较长时间保存。
3 溶血反应测定补体法 3.1 （一）CH50试验原理
补体最主要的活性是溶细胞作用，这种活性很容易通过溶血反应进行检测。在一个适当的、稳定的反应系统中，溶血反应对补体的剂量依赖呈一个特殊的S形曲线（图141）。
图141溶血程度与补体含量的关系
从图141可以看出，在轻微溶血和接近完全溶血时，补体量的变化不能使溶血程度有显著改变，速溶血对补体量的变化不敏感。但在半溶血（50％溶血）上下时曲线最陡，即使补体含量仅有较小变动时，溶血程度也会发生较大的改变，也就是说对补体量的变化非常敏感。故采用50％溶血作为终点指标要比100％溶血敏感得多，这一方法称为补体50％溶血（plementhemolysis50％），简称为CH50。
3.2 （二）CH50试验方法
取新鲜血清标本进行试验。按表143的要求在各管中加入试剂和反应物，一起放37℃水浴箱中温育30min。
做CH50试验时，应同时配制50％溶血的标准管。取2％SRBC悬液0.5ml，加2.0蒸馏水，使SRBC全部溶解；再加入2.0ml1.8％NaC1溶液校正为等渗溶液；最后加入2％SRBC悬液0.5ml，即成为50％溶血状态；混匀后取该悬液2.5ml，随试管一起进行温育，便是50％溶血标准管。
表143总补体溶血活性测定
试管号码 1:20稀释血清（ml） 巴比妥缓冲液（ml） 2U溶血素（ml） 2％羊红细胞（ml） 1 0.10 1.40 0.5 0.5 2 0.15 1.35 0.5 0.5 3 0.20 1.30 0.5 0.5 4 0.25 1.25 0.5 0.5 5 0.30 1.20 0.5 0.5 6 0.35 1.15 0.5 0.5 7 0.40 1.10 0.5 0.5 8 0.45 1.05 0.5 0.5 9 0.50 1.00 0.5 0.5 10 0.00 1.50 0.5 0.5
温育后将所有试管2500r/min离心5min，通过观察比较，选择溶血程度与标准管相近的两管在分光光度计上分别读取吸光度，以最接近标准管的那一管定为最高有效反应管，取其稀释倍数代入下列公式，求得CH50的测定值（单位U）。
每毫升血清总补体活性（单位）＝×稀释倍数
用CH50法测定总补体溶血活性时，所测得的值与反应体积成反比例关系，上例采用的液体总量为2.5ml，测得的总补体活性的参考范围为50～100U/ml。
3.3 （三）临床意义
CH50法主要检测的是补体经典途径的溶血活性，所反映的主要是补体9种成分的综合水平。如果测定值过低或者完全无活性，首先考虑补体缺陷，可分别检测C4、C2、C3和C5等成分的血清含量；严重肝病时血浆蛋白合成能力受损，营养不良时蛋白合成原料不足，这些也都可以不同程度地引起血清补体水平下降。
在患系统性红斑狼疮、类风湿性关节炎和强直性脊柱炎等自身免疫病时，血清补体水平随病情发生变化。疾病活动期补体活化过度，血清补体水平下降；病情稳定后补体水平又反应性增高。另外，补体各成分在不同的自身免疫病时可有特征性的表现（详见第二十五章），因此补体检测常可作为自身免疫病诊断或是否有疾病活动的参考指标。
